产品简介
DH5α-T1 为常规 DH5α改进型菌株。缺失核酸酶(endA1)基因,提高质粒的产量和质量;重组酶缺陷型(recA1)减少插入片段的同源重组概率,保证了插入 DNA 的稳定性。由于 lacZΔM15的存在以及 lacIq 基因的缺失,故不需要加 IPTG,只需要添加 X-gal 就可以进行基于α互补原理上的蓝白斑筛选实验。DH5α-T1 在基因组 tonA 区域的突变使菌株获得抵抗 T1 和 T5 噬菌体感染的能力。DH5α-T1 感受态细胞由特殊工艺制成,pUC19 质粒检测转化效率高达 108 cfu/μg DNA。
操作方法
(以氨苄青霉素抗性的 PUC19 质粒为例,以下操作均按无菌条件的标准进行)
1. 将感受态细胞置于冰水浴中化冻。待细胞刚化冻后,加入 1-5μL 含有 1-100ng 的质粒 DNA 到细胞中,用手指拨打管底,轻轻混匀。
2. 冰水浴中放置 30 分钟,不要晃动。
3. 42℃热击 60 秒钟,不要晃动。
4. 冰水浴中放置 2 分钟,不要晃动。
5. 加入 500μL 的室温的 SOC 或 LB 培养基。
6. 置于 37℃摇床中,150-200rpm,复苏培养 60 分钟。
7. 取 50-100μL 菌液涂布在含有氨苄青霉素抗性的 LB 平板上。待液体吸干后,倒置平板 37℃培养12-24 小时。
(平板划线分离法:复苏培养结束后,12000rpm 离心 30 秒钟,弃掉上清,留 100μL 左右的液体,用 200μL 吸头轻轻吹打散菌块, 取 10μL 重悬的菌液分多点滴在平板上,倾斜吸头,用吸头头部的侧面将滴在平板上的液体来回划线。这个方法可以获得更大的单克隆菌落)。
注意事项
1、感受态细胞应保存在-70℃,不可反复冻融,否则其转化效率将会降低。
2、实验过程中应严格无菌操作,防止其它 DNA 或杂菌的污染,避免为以后的筛选、鉴定带来影响。
3、转化时,转化效率与外源 DNA 的浓度在一定范围内成正比,但当加入的外源 DNA 量过多或体积过大反而会降低转化效率。转化时 DNA 体积要小于感受态细胞体积的十分之一。
4、转化率的计算:转化率=产生菌落的总数/铺板 DNA 总量。
5、为防止转化实验不成功,可以保留部分连接产物,以重新转化,将损失降到最低。